Особливості білкового обміну при німесулід-індукованому ураженні печінки та його відновлення під впливом безклітинних кріоконсервованих біологічних засобів

Автор(и)

  • Володимир Омелянович Студент Харківський національний університет імені В. Н. Каразіна https://orcid.org/0000-0002-0928-2695
  • Федір Володимирович Гладких Харківський національний університет імені В. Н. Каразіна https://orcid.org/0000-0001-7924-4048
  • Тетяна Іванівна Лядова Харківський національний університет імені В. Н. Каразіна https://orcid.org/0000-0002-5892-2599
  • Марія Сергіївна Матвєєнко Харківський національний університет імені В. Н. Каразіна https://orcid.org/0000-0002-0388-138X

DOI:

https://doi.org/10.32782/2415-8127.2026.73.9

Ключові слова:

німесулід, печінка, загальний білок, альбуміни, глобуліни, кріоекстракт, кріоконсервування, мезенхімальні стовбурові клітини

Анотація

Німесулід є селективним інгібітором циклооксигенази-2, який широко застосовують для лікування гострого болю та запальних процесів, однак його використання пов’язане з ризиком токсичного ураження печінки. Одним із провідних проявів такого ушкодження є пригнічення синтетичної функції гепатоцитів, що супроводжується зниженням концентрації білків плазми крові, насамперед альбумінів. Гіпоальбумінемія відображає порушення білоксинтезувальної функції печінки та має важливе патофізіологічне і прогностичне значення.
Мета роботи – охарактеризувати порушення білкового обміну у щурів за умов німесулід-індукованого ураження печінки та оцінити відновлювальну ефективність безклітинних кріоконсервованих біологічних засобів порівняно з референс-препаратом силібором.
Дослідження виконано на 42 щурах масою 200–220 г, розподілених на 6 груп. Ураження печінки моделювали внутрішньошлунковим введенням німесуліду у дозі 80 мг/кг протягом 5 діб. Тваринам вводили силібор 50 мг/кг, кріоекстракт плаценти 2,5 мл/кг, кріоекстракт селезінки 5,0 мл/кг та кондиціоноване середовище мезенхімальних стовбурових клітин 0,6 мл/кг. На 10 добу визначали загальний білок, альбуміни та глобуліни у сироватці крові.
Введення німесуліду спричиняло виражене пригнічення білкового гомеостазу: загальний білок знижувався до 36,0 г/л, альбуміни зменшувалися до 12,0 г/л, що зумовлювало зниження співвідношення альбумінів до глобулінів до 0,6. Такий профіль свідчить про синтетичну недостатність печінки. Силібор частково коригував порушення: загальний білок підвищувався до 52,0 г/л, альбуміни – до 24,0 г/л. Найбільш виражене відновлення спостерігали після введення кріоекстракту плаценти та кріоекстракту селезінки: рівень альбумінів досягав відповідно 31,0 та 30,0 г/л, загальний білок наближався до інтактних значень, а співвідношення альбумінів до глобулінів нормалізувалося. Кондиціоноване середовище мезенхімальних стовбурових клітин також підвищувало загальний білок та альбуміни, однак супроводжувалося відносно вищим рівнем глобулінів, що може відображати імуномодулюючий компонент дії.
П’ятиденне введення німесуліду призводить до вираженого пригнічення білоксинтезувальної функції печінки зі зниженням співвідношення альбумінів до глобулінів. Силібор забезпечує часткову корекцію порушень. Найбільш ефективне відновлення білкового профілю та показників синтетичної функції печінки забезпечують кріоекстракт плаценти та кріоекстракт селезінки.

Посилання

Kwon J, Kim S, Yoo H, Lee E. Nimesulide-induced hepatotoxicity: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 2019;14(1):e0209264. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0209264

Bessone F, Hernandez N, Mendizabal M, Ridruejo E, Gualano G, Fassio E, Peralta M, Fainboim H, Anders M, Tanno H, Tanno F, Parana R, Medina-Caliz I, Robles-Diaz M, Alvarez-Alvarez I, Niu H, Stephens C, Colombato L, Arrese M, Reggiardo MV, Ono SK, Carrilho F, Lucena MI, Andrade RJ. Serious liver injury induced by nimesulide: an international collaborative study. Arch Toxicol. 2021;95(4):1475-1487. DOI: https://doi.org/10.1007/s00204-021-03000-8

Soeters PB, Wolfe RR, Shenkin A. Hypoalbuminemia: pathogenesis and clinical significance. JPEN J Parenter Enteral Nutr. 2019;43(2):181-193. DOI: https://doi.org/10.1002/jpen.1451

Zhou T, Yu ST, Chen WZ, Xie R, Yu JC. Pretreatment albumin globulin ratio has a superior prognostic value in laryngeal squamous cell carcinoma patients: a comparison study. J Cancer. 2019;10(3):594-601. DOI: https://doi.org/10.7150/jca.28817

Mihajlovic M, Vinken M. Mitochondria as the target of hepatotoxicity and drug-induced liver injury: molecular mechanisms and detection methods. Int J Mol Sci. 2022;23(6):3315. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms23063315

Villanueva-Paz M, Morán L, López-Alcántara N, Freixo C, Andrade RJ, Lucena MI, Cubero FJ. Oxidative stress in drug-induced liver injury (DILI): from mechanisms to biomarkers for use in clinical practice. Antioxidants (Basel). 2021;10(3):390. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10030390

Mantovani A, Garlanda C. Humoral innate immunity and acute-phase proteins. N Engl J Med. 2023;388(5):439-452. DOI: https://doi.org/10.1056/NEJMra2206346

Seidkhani-Nahal A, Allameh A, Soleimani M. Antioxidant and reactive oxygen species scavenging properties of cellular albumin in HepG2 cells is mediated by the glutathione redox system. Biotechnol Appl Biochem. 2019;66(2):163-171. DOI: https://doi.org/10.1002/bab.1708

Duran-Güell M, Flores-Costa R, Casulleras M, López-Vicario C, Titos E, Díaz A, Alcaraz-Quiles J, Horrillo R, Costa M, Fernández J, Arroyo V, Clària J. Albumin protects the liver from tumor necrosis factor α-induced immunopathology. FASEB J. 2021;35(2):e21365. DOI: https://doi.org/10.1096/fj.202001615RRR

Ma N, Li S, Lin C, Cheng X, Meng Z. Mesenchymal stem cell conditioned medium attenuates oxidative stress injury in hepatocytes partly by regulating the miR-486-5p/PIM1 axis and the TGF-β/Smad pathway. Bioengineered. 2021;12(1):6434-6447. DOI: https://doi.org/10.1080/21655979.2021.1972196

Temnov A, Rogov K, Zhalimov V, Igor P, Pekov S, Bader A, Sklifas A, Giri S. The effect of a mesenchymal stem cell conditioned medium fraction on morphological characteristics of hepatocytes in acetaminophen-induced acute liver failure: a preliminary study. Hepat Med. 2019;11:89-96. DOI: https://doi.org/10.2147/HMER.S196354

Ghoneum M, El-Gerbed MSA. Human placental extract ameliorates methotrexate-induced hepatotoxicity in rats via regulating antioxidative and anti-inflammatory responses. Cancer Chemother Pharmacol. 2021;88(6):961-971. DOI: https://doi.org/10.1007/s00280-021-04349-4

Koshurba IV, Chyzh MO, Hladkykh FV, Bielochkina IV. Vplyv krioekstraktu platsenty na metabolichnyi ta funktsionalnyi stan pechinky za D-halaktozaminovoho hepatytu. Innovative Biosystems and Bioengineering. 2022;6(2):64-74. DOI: https://doi.org/10.20535/ibb.2022.6.2.264774

Koshurba IV, Hladkykh FV, Chyzh MO, Bielochkina IV, Rublova TV. Hepatotropni efekty trykomponentnoi protyvyrazkovoi terapii ta krioekstraktu platsenty: rol statevykh chynnykiv u lipoperoksydatsii. Fiziolohichnyi zhurnal. 2022;68(5):25-32. DOI: https://doi.org/10.15407/fz68.05.025

Koshurba IV, Chyzh MO, Hladkykh FV, Komorovskyi RR, Marchenko MM. Role of cryopreserved placenta extract in prevention and treatment of paracetamol-induced hepatotoxicity in rats. Scripta Medica. 2023;54(2):133-139. DOI: https://doi.org/10.5937/scriptamed54-44663

Chekman IS, Pohotova HA, Nebesna TYu, et al. Kvantovo-farmakolohichne doslidzhennia antyoksydantnykh vlastyvostei sylimarynu. Ukrainskyi biofarmatsevtychnyi zhurnal. 2014;(2):24-28.

Avelar CR, Pereira EM, Farias Costa PR, Jesus RP, Oliveira LPM. Effect of silymarin on biochemical indicators in patients with liver disease. World J Gastroenterol. 2017;23(27):5004-5017. DOI: https://doi.org/10.3748/wjg.v23.i27.5004

Shanaida MI, Oleshchuk OM, Lykhatskyi PH, Kernychna IZ. Hepatoprotective activity of summer savory extract. Farmatsevtychnyi chasopys. 2017;(2):91-97. DOI: https://doi.org/10.11603/2312-0967.2017.2.7899

Koshurba IV. Vplyv krioekstraktu platsenty pry CCl4-indukovanomu urazhenni pechinky. Suchasni medychni tekhnolohii. 2022;(3):46-54. DOI: https://doi.org/10.34287/MMT.3(54).2022.9

Stefanov OV, editor. Doklinichni doslidzhennia likarskykh zasobiv. Kyiv: Avitsena; 2001.

Shepitko VI. Strukturno-funktsionalni pokaznyky kriokonservovanoi pechinky [doctoral dissertation].

Bespalova IH. Peptydnyi sklad ta biolohichna diia ekstraktyv kriokonservovanykh tkanyn [PhD dissertation].

Hladkykh FV. Vplyv kondytsionovanoho seredovyshcha mezenkhimalnykh stovburovykh klityn pry avtoimunnomu hepatyti. Odeskyi medychnyi zhurnal. 2024;(6):45-50. DOI: https://doi.org/10.32782/2226-2008-2024-6-8

Singh BK, Tripathi M, Chaudhari BP, Pandey PK, Kakkar P. Natural terpenes prevent mitochondrial dysfunction during nimesulide hepatotoxicity. PLoS One. 2012;7(4):e34200. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0034200

American Veterinary Medical Association. AVMA guidelines for the euthanasia of animals. 2020.

Lowry OH, Rosenbrough NJ, Farr AL, Randall RJ. Protein measurement with the folin phenol reagent. J Biol Chem. 1951;193:265-275.

Zar JH. Biostatistical analysis. 5th ed. Upper Saddle River (NJ): Prentice-Hall; 2014.

Yan F, Robert M, Li Y. Statistical methods in biomedical research. Int J Physiol Pathophysiol Pharmacol. 2017;9(5):157-163.

Wu R, Fan X, Wang Y, Shen M, Zheng Y, Zhao S, Yang L. Mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles in liver immunity and therapy. Front Immunol. 2022;13:833878. DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2022.833878

Shojai S, Haeri Rohani SA, Moosavi-Movahedi AA, Habibi-Rezaei M. Human serum albumin in neurodegeneration. Rev Neurosci. 2022;33(7):803-817. DOI: https://doi.org/10.1515/revneuro-2021-0165

Wang X, Zhang Z, Wu SC. Health benefits of Silybum marianum: phytochemistry, pharmacology, and applications. J Agric Food Chem. 2020;68(42):11644-11664. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.0c04791

Williams T, Salmanian G, Burns M, Maldonado V, Smith E, Porter RM, Song YH, Samsonraj RM. Versality of mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles in tissue repair and regenerative applications. Biochimie. 2023;207:33-48. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biochi.2022.11.011

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-05-29

Як цитувати

Студент, В. О., Гладких, Ф. В., Лядова, Т. І., & Матвєєнко, М. С. (2026). Особливості білкового обміну при німесулід-індукованому ураженні печінки та його відновлення під впливом безклітинних кріоконсервованих біологічних засобів. Науковий вісник Ужгородського університету. Серія «Медицина», (1(73), 49-58. https://doi.org/10.32782/2415-8127.2026.73.9

Статті цього автора (авторів), які найбільше читають